想问一下细胞裂解液选择蛋白酶抑制剂时有什么原则吗?受不受组织来源的影响?胞膜和胞浆有区 别吗?
一般来说提取时加入广谱的蛋白酶抑制剂就可以了,操作时保持低温。除非有文献特别指明用特殊 的方法,一般来说都没有区别。
核内抗原WesternBlot 内参选择什么合适?
可以选用组蛋白,组蛋白在细胞核中的表达是很稳定的,有很多都可以当成内参,在网上 查查就可以选出你要的内参。
我用的是可视 marker,但是电泳总跑不全 8 条带,请问什么原因?怎样改善?胶用过 8%,10%,12%,都是这样。marker 是新买的。
一般来说,是小分子量Marker 跑走了,增加胶浓度或减少电泳时间试试看。当然梯度胶也是不错 的选择。
是否 WesternBlot 实验半定量一定要加ACTIN 内参?
对于发表文章的实验最好加内参,实验严谨。
不能很好地将大分子量蛋白转移到膜上,转移效率低怎么样解决?
可以考虑:转移缓冲液中加入 20%甲醇(是指终浓度),因为甲醇可降低蛋白质洗脱效率,但可 增加蛋白质和NC 膜的结合能力,甲醇可以防止凝胶变形,甲醇对高分子量蛋白质可延长转 移时间;转移缓冲液加入终浓度0.1%SDS,也是为了增加转移效率;用优质的转移膜,或使用 小孔径的NC 膜(0.2 微米)。
蛋白质的分子量跨度很大,如要分离小 21KD,中至66KD,大至170KD,可以一次做好吗?
这么广的分布不好转移,一般建议:21kd 和66kd 可以一起转,12%SDS-PAGE,湿转 120mA,45-60min 就可以了,可以根据你实验室的经验调节;170kd 用7%SDS-PAGE, 200mA90-120min。
跑电泳的时候配的胶总是“缩”是什么原因呢?是有的成分不对吗?
没什么问题,就是你胶里的水分被蒸发了。过夜时拿保鲜膜包起来,在里面加点水保持湿度就可以 了;也可能母液(30%聚丙酰胺)有问题,你可以重新配制一份观察;能够替换的试剂,尽量换一 下,选用好的试剂。
上下槽缓冲液有何要求,怎样才能达到最佳效果。
无特殊要求。但我们一般是上槽放新鲜的缓冲液,下槽可以是重复使用过一两次的缓冲液。
做 WesternBlot 时,同样的抗体免疫组化能做出,而WesternBlot 却不能?
这多半是抗体的问题,要看抗体的说明,是否能做 WesternBlot 和免疫组化。
如果是 6×8 转印膜,要加多少一抗?
一抗的稀释度是有说明的,根据你的一抗看看就知道了,但是那么大的膜孵育体积一般最少为3- 5ml
转膜后经丽春红染色的条带,为什么大蛋白分子的一端的转膜好象不是很好,为什么?
这是正常的,大分子的蛋白转移的慢,你延长转移时间和电流,大分子一端就会好的多,但是小分 子的就有可能会变淡。
检测同一抗体的磷酸化和非磷酸化的抗原可以在同一张膜上吗?
可以。
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