组织病理技术
组织处理:
1.取新鲜组织厚度不超过 5mm,10% 中性福尔马林固定,大于 24 小时。
2.固定后冲水 12-24 小时,
3.75%酒精,1 次,1 小时,
4.85%酒精,1 次,1 小时,
5.95%酒精,3 次,1 小时,
6.100%酒精,3 次,1 小时,
7.二甲苯,2 次,1 小时,
8.石蜡浸泡,3 次,2 小时,
HE染色:{水化}
1.二甲苯,2 次,5-10 分钟,
2.100%酒精,1 次,1-2分钟,
3.95%酒精,1 次,1-2分钟,
4.85%酒精,1 次,1-2分钟,
5.75%酒精,1 次,1-2分钟,
6.过蒸馏水,
{染色}
1.Mayer 氏苏木素,1分钟,
2.温水冲洗,5-10 分钟,
3.75% 盐酸酒精, 1-2分钟,
4.自来水冲洗,30秒钟,
5.依红复染,1-2分钟,
6.自来水洗,30秒钟,
7.85%酒精,1 次,1-2分钟,
8.95%酒精,2 次,1-2分钟,
9.100%酒精,2 次,1-2分钟,
10. 二甲苯,2 次,5-10 分钟,
11. 中性树胶封片。
免疫组化染色
一.石蜡切片免疫组化染色实验步骤:
1、石蜡切片脱蜡至水:(石蜡切片染色前应置 60℃ 1 小时)。
(1)二甲苯?、II,各 10 分钟。
(2)梯度酒精:100%,2 分钟? 95%,2 分钟? 80%,2 分钟? 70%2 分钟。
(3)蒸馏水洗:5 分钟,2 次(置于摇床)。
2.过氧化氢封闭内源性过氧化物酶:3%H2O2,室温 10 分钟(避光)。
3.蒸馏水洗:5 分钟,2 次(置于摇床)。
4.抗原修复:根据待检测的抗原,选择适当的方法。附:抗原修复液(10mM pH 6.0 枸橼酸钠缓冲液)的配制
(1)储备液的配制:
A 液:枸橼酸三钠-2H2O 29.41g + 蒸馏水 1000ml
B 液:枸橼酸 21g + 蒸馏水 1000ml
(2)工作液的配制:A 液 82ml + B 液 18ml + 蒸馏水 900ml
抗原修复的方法:
(1)高压锅处理技术:枸橼酸钠缓冲液(10mM,PH6.0),淹没切片,盖上锅盖,高压锅内煮沸,上汽 3 分钟后缓慢冷却(可用自来水在高压锅外冲,以助冷却)。
(2)微波处理技术:用塑料切片架,置于塑料或耐温玻璃容器内,枸橼酸钠缓冲液淹没切片,选择中高或高档,5 分钟;取出并补充已预热的枸橼酸钠缓冲液;再选择中高或高档,5 分钟.(最佳温度为 92?95℃)
(3)酶消化处理:此略。
抗原修复的注意事项
(1)组织不能干。
(2)选择抗原修复方法要因抗体而异。
(3)该方法主要用于 10%福尔马林固定、石蜡包埋组织。
(4)抗原修复后至 DAB 显色的过程中,均需用 PBS 缓冲液。
5.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
6.正常血清封闭:
从染片缸中取出切片,擦净切片背面水分及切片正面组织周围的水分(保持组织呈湿润状态),滴加正常山羊或兔血清(与第二抗体同源动物血清)处理,37℃,15 分钟。附:正常血清配制 (或按试剂盒规定的浓度配制)按 1:20 比例,用 PBS 配制,每张切片需要量按 50?l+5?l (10%抛洒量)计 算 。
7.滴加第一抗体:
用滤纸吸去血清,不洗,直接滴加第一抗体,37℃ 2 小时(也可置于 4℃冰箱过夜)。
8.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
9.滴加生物素化的二抗,37℃,40 分钟。
10.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
11.滴加三抗(SAB复合物),37℃,40 分钟。
12.PBS:5 分钟,2 次(置于摇床)。
13.DAB显色,镜下观察,适时终止(自来水冲终止)。附:DAB 的配制
(1)储备液(DAB 25mg/ml)的配制:DAB 250mg + PBS 10ml,待完全溶解后分装成 1ml,100?l,50,20l 等,—20℃,冻存。(2)工作液:DAB 储备液 20?l + PBS 1000?l + 3% H2O25
14.自来水(细水)充分冲洗。
15.苏木素复染,室温,30 秒,自来水冲洗。
16.自来水冲洗返蓝,15 分钟。
17.梯度酒精脱水:80%,2 分钟 ? 95%,2 分钟 ? 100%,2 次,5 分钟。
18.二甲苯透明:I,II(二甲苯)各 5 分钟
19.封片:加拿大树胶(或中性树胶)封片。
二.细胞爬片的免疫组化染色:
1.取出细胞爬片,迅速置入冷丙酮固定 20??30 分钟。
2.蒸馏水浸泡 5 分钟,2 次。
3.打孔液浸泡 5 分钟。
4.蒸馏水浸泡 5 分钟,2 次。
5.后接前述实验步骤的第 6 步(正常血清封闭)。
注:第 3、4 步仅用于检测细胞内抗原,检测细胞膜抗原时不用。
三.冰冻切片的免疫组化染色:
1.新鲜组织立即在恒冷冰冻切片机内切片(也可-80℃保存),厚度为 5~6m。
2.载玻片可不打底,裱片后,立即用电吹风吹干。
3.如不马上染色,可密封后-20℃保存。
4.染色前用冷丙酮在 4℃固定 10-20 分钟。
5.PBS 洗 2 次,每次 5 分钟,(必要时应用 0.1%柠檬酸钠+0.1%triton 打孔)
6.3% H2o2 灭活内源性过氧化物酶,20 分钟,避光;
7.用 PBS 洗 2 次,每次 5 分钟;
8.接前面实验步骤第六步.
四.切片的预处理:
1.洗衣粉液浸泡 30 分钟,冲洗,晾干。
2.洗液 (含强酸、高锰酸钾等)浸泡 24 小时,冲洗,晾干。
3.APES(1:50 丙酮溶液) 10-20 秒(注意:不能用塑料容器及塑料切片架)。
4.纯丙酮 I,约 10 秒。纯丙酮 II,约 5 秒
5.晾干或烤箱内烤干,备用。
下一篇:流式细胞仪常用的几种检测方法
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