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Molday ION罗丹明B荧光标记物--细胞标记和装载特性分析

发布者:艾美捷科技    发布时间:2024-08-05     
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随着干细胞治疗应用的增长,对其移植后体内检测方法的开发和完善需求也在增加。磁共振成像已成为追踪移植干细胞的主要方式之一。MRI的优势在于它是一种非侵入性方法,不沉积电离能量,适合进行纵向研究。为了使用MRI区分特定细胞,这些细胞必须用磁性对比剂进行标记。目前,最彻底表征的试剂,Feridex,一种FDA批准的用于肝脏成像的超顺磁性氧化铁(SPIO)对比剂,已不再可用。来自Biopal的Molday ION Rhodamine-B TM(MIRB)是一种新型SPIO对比剂,专为细胞标记应用而配制。MIRB的磁性核心和流体动力学尺寸分别大约为8和35纳米,Zeta值为-31毫伏,与Rhodamine-B(Rh-B)(每个颗粒2个荧光体)结合,可以通过MRI和荧光显微镜观察。Rh-B的激发波长为555纳米,发射波长为565-620纳米。在这项研究中,我们定性和定量地表征了MIRB在非人灵长类动物(NHP)间充质干细胞(MSC)上的标记和装载特性,包括在不同标记浓度下的平均内部铁/MSC,以及细胞内MIRB对MSC活性、增殖能力和功能的影响。我们对MIRB标记的MSC的体外MR特性进行了全面评估,描述了弛豫率测量、最佳成像序列的确定以及在临床1.5 T西门子交响曲MRI设备上的理想检测极限。这些研究为新的SPIO对比剂用于细胞标记和体内MRI检测的未来应用奠定了基础,并提供了原理证明。

 

艾美捷Molday ION罗丹明B荧光标记物(BPL-CL-50Q02-6A-50)部分结果分析:

1 细胞标记和装载特性分析

1.1 细胞内MIRB分布

经过20小时的孵化,观察到内化的MIRB定位在MSC的细胞质中,特别是在核周体的内吞体中。这种定位模式在光学和荧光显微镜下都很明显,并且适用于所有考虑的标记条件。图1显示了通过普鲁士蓝染色增强的光显微镜图像,用于铁(Fe)的可视化,以及MSC细胞质中Rh-B的荧光显微镜图像。

1.2 标记效率

标记效率,通过流式细胞仪检测Rh-B阳性细胞的百分比,对于用5 mg Fe/ml标记的细胞范围从65.9%,对于用MIRB浓度达到或超过20 mg Fe/ml标记的细胞则超过95%。图2显示了在高达100 mg Fe/ml的MIRB浓度下标记的MSC中Rh-B存在的流式细胞术数据。

1.3 MIRB摄取量

平均每MSC中内化的MIRB量,以pg Fe计,如图3所示。平均Fe/MSC的计算是手动在血细胞计数板上进行的细胞计数的直接函数。手动细胞计数引入的误差,估计在10-15%(37),代表了主要误差以及细胞内铁含量估算的准确性限制。来自六项检测的数据表明,随着MIRB标记浓度的增加,出现了饱和现象。在20至30 mg Fe/ml之间的标记浓度达到平台期,结果平均每MSC摄取量约为15-20 pg Fe。


Molday ION罗丹明B荧光标记物


Molday ION罗丹明B荧光标记物部分文献参考:

1. Budde MD, Frank JA. Magnetic tagging of therapeutic cells forMRI. J Null Med 2009; 50(2): 171–174.

2. Adler ED, Bystrup A, Briley-Saebo KC, Mani V, Young W, Giovanonne S, Altman P, Kattman SJ, Frank JA, Weinmann HJ, KellerGM, Fayad ZA. In vivo detection of embryonic stem cell-derivedcardiovascular progenitor cells using Cy3-labeled Gadofluorine Min murine myocardium. JACC Cardiovasc Imag 2009; 2(9):1114–1122.

3. Brekke C, Williams SC, Price J, Thorsen F, Modo M. Cellularmultiparametric MRI of neural stem cell therapy in a rat gliomamodel. Neuroimage 2007; 37(3): 769–782.

4. Guzman R, Uchida N, Bliss TM, He D, Christopherson KK, Stellwagen D, Capela A, Greve J, Malenka RC, Moseley ME, Palmer TD,Steinberg GK. Long-term monitoring of transplanted humanneural stem cells in developmental and pathological contextswith MRI. Proc Natl Acad Sci USA 2007; 104(24): 10211–10216.

5. Higuchi T, Anton M, Dumler K, Seidl S, Pelisek J, Saraste A, WellingA, Hofmann F, Oostendorp RA, Gansbacher B, Nekolla SG, BengelFM, Botnar RM, Schwaiger M. Combined reporter gene PET andiron oxide MRI for monitoring survival and localization of transplanted cells in the rat heart. J Nucl Med 2009; 50(7): 1088–1094.

6. Onda T, Honmou O, Harada K, Houkin K, Hamada H, Kocsis J.D.Therapeutic benefits by human mesenchymal stem cells (hMSCs)and Ang-1 gene-modified hMSCs after cerebral ischemia. J CerebBlood Flow Metab 2008; 28(2): 329–340.

7. Chang NK, Jeong YY, Park JS, Jeong HS, Jang S, Jang MJ, Lee JH,Shin SS, Yoon W, Chung TW, Kang HK. Tracking of neural stemcells in rats with intracerebral hemorrhage by the use of 3T MRI.Korean J Radiol 2008; 9(3): 196–204.

8. Dousset V, Tourdias T, Brochet B, Boiziau C, Petry KG. How to tracestem cells for MRI evaluation? J Neurol Sci 2008; 265(1–2):122–126.


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